1. 安靜、緩慢移動雙手、快速處理，以減少動物緊迫。
  2. 抓取小鼠尾巴基部，將小鼠置於堅固表面，以手指捏住兩耳間頸部皮膚，並緊握住小鼠尾巴。注意：皮膚捏太緊會造成小鼠窒息，太鬆讓小鼠轉動頭部會造成咬傷。
  1. 溫和地保定大鼠以減少大鼠緊張並避免操作者遭受大鼠的攻擊。
  2. 大鼠尾部的上皮容易被拉脫落，故在保定時需抓取大鼠的尾根部。
  3. 保定時以一手保定尾根部，另一手以拇指與食指環繞背部固定其下顎後方，使頭部不易任意轉動。或以食指與中指由背部固定其頭頸部，並以其他三指握住大鼠身體。

  • 血液收集量
  1. 老鼠血液含量約佔體重5-8﹪（小鼠1.5-2.5 ml、大鼠15-35 ml）。
  2. 每次最多採總血量10﹪，可產生最低的危害。
  3. 每天採血，最多可採1﹪
  4. 恢復情形：採血量7.5﹪－1週可恢復、
    採血量10﹪－2週可恢復、
    採血量15﹪－4週可恢復。
  • 採血原則
  1. 先剃毛或將毛往兩側撥開，較容易觀察血管。
  2. 注射或切開的部位必須以酒精消毒。
  3. 加熱或加壓可讓血管擴張，而更容易看到血管。
  4. 必須確定已經止血，才可將老鼠放回飼養盒。

方法一

  1. 以加熱燈照射老鼠，小心使用避免造成灼傷，約5-10分鐘。
  2. 使用老鼠固定器，在尾巴末端以刀片或剪刀切下約0.3公分的組織。取tube收集末端流出之血液，並以手指輕輕按摩尾巴，加速血液流動。
  3. 結束後使用紗布在傷口加壓，確定已止血才放回飼養盒。

方法二

  1. 以加熱燈照射老鼠，小心使用避免造成灼傷，約5-10分鐘。
  2. 使用老鼠固定器，尋找尾巴動脈或靜脈。在靠近尾巴1/3部位，以刀片橫切，劃開皮膚及血管，取tube收集血液。傷口勿切割太深，以免尾巴斷裂。
  3. 結束後使用紗布在傷口加壓，確定已止血才放回飼養盒。

方法三

  1. 以加熱燈照射老鼠。
  2. 將老鼠置於加熱燈下照射，白老鼠可清楚看到尾靜脈，選擇適當大小針頭採血。
  1. 心臟採血最多可採約1ml血液。
  2. 在劍狀軟骨後方稍偏左處下針，針頭與胸骨角度約10-30度。入針後試著回抽，當看到血液進入針筒，即為心臟位置。
  1. 使用微離心管收集麻醉老鼠的眼窩血液。
  2. 以拇指及食指拉住眼睛後面皮膚，讓眼球凸出。
  3. 微離心管從內側眼角進入，經過結膜到眼球後方，輕輕轉動管子，血液會延管子流出。
  4. 之後對眼皮稍加壓力可止血。


安全注射量

 
小鼠
大鼠
皮下注射 2-3 ml ＜20 G 2-5 ml ＜20 G
肌肉注射 0.05 ml ＜23 G 0.3 ml ＜21G
靜脈注射 0.05 ml ＜25 G 1.5-2.5 ml ＜23G
腹腔注射 2-3 ml ＜21G 3-5 ml ＜21G
胃管灌注 0.1-0.3 ml 3-5 ml
  1. 皮下注射位置通常在頸部或側腹部..等皮膚較鬆弛的部位。
  2. 取適當大小針頭，穿過皮膚約0.5至1公分，若可毫無阻力將物品注入，即為正確注射位置。
  3. 小心注入大量液體時可能會漏出。

小鼠肌肉較小，通常不建議使用。腿前側肌肉為施打部位。

  • 靜脈注射
  1. 注射部位通常在尾背靜脈。
  2. 將老鼠置於加熱燈下照射，白老鼠可清楚看到尾靜脈，選擇適當大小針頭注射。
  1. 保定老鼠時，將老鼠頭部朝下傾斜，讓頭部低於身體，避免刺傷內臟。
  2. 腹腔注射位置通常在下腹部，以酒精消毒後，取適當大小的針頭，穿過下腹部的皮膚、皮下及腹膜。
  3. 先回抽以確定沒有刺到腸或膀胱。若無回抽物，即可將物品緩慢注入腹腔；若刺到腸或膀胱，則必須換掉針頭及針筒。
  1. 先測量插入的深度，距離為鼻子到第一肋間，必須在胃管上做記號。
  2. 盡可能將老鼠身體拉直，以利胃管進入。由門牙與臼齒間進去，在碰到咽喉時，老鼠會有吞嚥的動作，可幫助胃管進入食道。
  3. 假如小鼠有掙扎的情形或呼吸困難，必須將胃管拉回，再重複前述動作。
  4. 確定位置正確即可將物品注入，之後必須觀察老鼠有無任何異常情形。
  1. 以拇指及食指拉住眼睛後面皮膚，讓眼球凸出。
  2. 針頭從內側眼角進入，經過結膜到眼球後方注射。